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科研進(jìn)展
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近日,華東理工大學(xué)藥學(xué)院、生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室、光遺傳學(xué)與合成生物學(xué)交叉學(xué)科研究中心楊弋教授團(tuán)隊(duì)與中國科學(xué)院上海營養(yǎng)與健康研究所科研團(tuán)隊(duì)在蛋白質(zhì)光遺傳學(xué)控制技術(shù)研究中取得突破性進(jìn)展,在國際學(xué)術(shù)期刊《自然—通訊》上發(fā)表了題為“Controllingprotein stability with SULI, a highly sensitive tag for stabilization upon lightinduction”的研究文章。

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基因編輯、轉(zhuǎn)錄調(diào)控和RNA干擾是目前廣泛應(yīng)用的活細(xì)胞蛋白質(zhì)操縱方法,可以用于研究特定蛋白在復(fù)雜生物過程中的功能。特別是CRISPR-Cas系統(tǒng),其作為一種靈活和強(qiáng)大的基因組編輯工具,近年來得到了極為廣泛的應(yīng)用。然而,這些技術(shù)均是在基因或mRNA水平對蛋白質(zhì)進(jìn)行控制,而mRNA轉(zhuǎn)錄生成和翻譯均需要時(shí)間,使得這些方法在表型控制方面存在有較大的延遲。內(nèi)源性細(xì)胞蛋白可以在蛋白酶體靶向的情況下,通過蛋白酶體靶向的嵌合分子(PROTACs)或通過降解特定的抗體和抗體受體來進(jìn)行快速降解。然而,發(fā)展這些蛋白特異的小分子誘導(dǎo)物或者抗體耗時(shí)較長且價(jià)格高昂,而且它們在生物體內(nèi)自由擴(kuò)散,一旦加入便很難從生物系統(tǒng)中去除,導(dǎo)致蛋白質(zhì)調(diào)控的可逆性差。因此,發(fā)展可以直接在蛋白水平對蛋白質(zhì)進(jìn)行高時(shí)空分辨調(diào)控的工具是至關(guān)重要的。

光由于其精確的時(shí)間和空間分辨率可以滿足理想的蛋白質(zhì)控制開關(guān)的幾乎所有要求。迄今為止,科學(xué)家們已經(jīng)設(shè)計(jì)出了多種光誘導(dǎo)降解子(LIDs),并成功應(yīng)用于酵母、線蟲、斑馬魚和哺乳動(dòng)物細(xì)胞等模式生物中蛋白質(zhì)降解的光遺傳學(xué)精密調(diào)控。已報(bào)道的LIDs均包括一個(gè)來自高等植物的藍(lán)光敏感LOV蛋白和一個(gè)C端降解子短肽(degron)。在黑暗條件下,LOV蛋白的C端α螺旋與它的核心結(jié)構(gòu)域相互作用,從而將降解子短肽保護(hù)起來,不被蛋白酶識別和降解。在藍(lán)光照射下,LOV蛋白的C端α螺旋與LOV核心結(jié)構(gòu)域解離,降解子短肽被釋放出來,進(jìn)而被蛋白酶識別并降解。然而,這些LIDs即使在非誘導(dǎo)狀態(tài)下也會破壞目標(biāo)蛋白的穩(wěn)定性,從而縮小了蛋白質(zhì)水平的動(dòng)態(tài)調(diào)控范圍。此外,LIDs中的降解子短肽如鳥氨酸脫羧酶(ODC)的C端序列和四氨基酸小肽RRRG,只能在蛋白質(zhì)的C端起作用。因此,LIDs必須融合在目標(biāo)蛋白質(zhì)的C端,因此對于不耐受C端融合的蛋白質(zhì)來說并不適用。因此,發(fā)展具有優(yōu)良光誘導(dǎo)特性且更好通用性的光敏感蛋白質(zhì)降解子仍是非常急迫且具有挑戰(zhàn)性的。

在本研究中,研究團(tuán)隊(duì)基于光敏蛋白VVD發(fā)展了光誘導(dǎo)穩(wěn)定的蛋白質(zhì)降解標(biāo)簽SULI(stabilization upon light induction)。在黑暗條件下,SULI標(biāo)簽會被細(xì)胞的降解系統(tǒng)識別并降解;在藍(lán)光照射下,SULI標(biāo)簽則非常穩(wěn)定。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,SULI可被用于調(diào)控多種報(bào)告蛋白的穩(wěn)定性。更重要的是,SULI可插入在目的蛋白的N端、C端甚至是內(nèi)部來調(diào)控它們的穩(wěn)定性。進(jìn)一步研究結(jié)果表明,SULI對目的蛋白的降解是光強(qiáng)依賴的,并且可以震蕩式調(diào)控目的蛋白在細(xì)胞中的豐度。本研究還研究了SULI介導(dǎo)蛋白質(zhì)降解的分子機(jī)制。結(jié)果表明,SULI是通過非賴氨酸泛素化依賴的蛋白酶體途徑降解的,并且還伴隨有聚集與去聚集過程。研究團(tuán)隊(duì)利用顯微成像實(shí)驗(yàn)證明SULI在其降解過程中會發(fā)生聚集,并在Hsp104蛋白的輔助下完成去聚集并進(jìn)入蛋白酶體完成降解過程。本研究隨后利用SULI調(diào)控酵母細(xì)胞內(nèi)源蛋白SicI的穩(wěn)定性,實(shí)現(xiàn)酵母細(xì)胞周期的精確控制。此外,SULI還可用于調(diào)控斑馬魚中蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性,通過對Pitx2蛋白穩(wěn)定性的調(diào)控,本研究實(shí)現(xiàn)了斑馬魚發(fā)育過程的精確控制。綜上,SULI為研究不同細(xì)胞過程中的蛋白質(zhì)代謝和功能提供了一個(gè)強(qiáng)大而方便的工具。

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該篇論文第一作者為茅繆偉博士(現(xiàn)為中國科學(xué)院上海營養(yǎng)與健康所副研究員)、錢亞杰博士與張文耀博士,通訊作者為楊弋教授和陳顯軍教授。該研究獲得了中國科學(xué)院上海營養(yǎng)與健康所王澤峰研究員的大力支持。該研究得到了國家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃、國家自然科學(xué)基金、上海市細(xì)胞代謝光遺傳學(xué)技術(shù)前沿科學(xué)研究基地、生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室基金、教育部基本科研業(yè)務(wù)費(fèi)等經(jīng)費(fèi)資助。

原文鏈接:https://www.nature.com/articles/s41467-023-37830-0

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來源:華東理工大學(xué)新聞網(wǎng)

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